TEMARIO       Inicio                  < Previo | Próximo > 

LABORATORIO EN BIOQUÍMICA CLÍNICA

1. MÓDULO 1: GESTIÓN INTEGRAL DEL LABORATORIO Y FASE PREANALÍTICA
Objetivo: Establecer los fundamentos de la gestión de calidad, seguridad biológica y la optimización de los procesos previos al análisis, minimizando la variabilidad clínica y los errores operativos.

1.1. Gestión de Calidad y Normativa Internacional
1.1.1. Implementación de la Norma ISO 15189:2022 en el laboratorio clínico.
1.1.2. Gestión de riesgos y bioseguridad en entornos de alta complejidad.
1.1.3. Indicadores de desempeño (KPIs) y mejora continua de procesos.

1.2. Fisiología de la Variabilidad Biológica
1.2.1. Factores preanalíticos intrínsecos: edad, sexo, etnia y ritmos circadianos.
1.2.2. Factores extrínsecos: ayuno, actividad física, fármacos y suplementos.
1.2.3. Cronobiología aplicada a la toma de muestras.

1.3. Procedimientos de Obtención y Manejo de Especímenes
1.3.1. Técnicas avanzadas de venopunción y recolección de fluidos biológicos.
1.3.2. Estabilidad de los analitos, sistemas de transporte y cadena de frío.
1.3.3. Criterios estrictos de rechazo de muestras y gestión de interferencias (hemólisis, ictericia, lipemia).

1.4. Automatización de la Fase Preanalítica
1.4.1. Sistemas de clasificación, centrifugación y alicuotado automatizado.
1.4.2. Trazabilidad mediante tecnología de radiofrecuencia (RFID) y códigos de barras.
1.4.3. Impacto de la robótica en la eficiencia del flujo de trabajo (Workflow).

2. MÓDULO 2: INSTRUMENTACIÓN AVANZADA Y METROLOGÍA ANALÍTICA
Objetivo: Profundizar en los principios fisicoquímicos de las tecnologías de medición y el aseguramiento metrológico de los resultados.

2.1. Espectrofotometría y Fotometría de Absorción
2.1.1. Principios de óptica cuántica aplicados a la medición química.
2.1.2. Fotometría de reflexión, turbidimetría y nefelometría de alta sensibilidad.
2.1.3. Calibración fotométrica y mantenimiento preventivo de sistemas ópticos.

2.2. Técnicas de Separación: Cromatografía y Electroforesis
2.2.1. Cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) en el análisis de rutina.
2.2.2. Electroforesis capilar y en gel de agarosa para el estudio de proteínas.
2.2.3. Aplicaciones clínicas de la cromatografía de gases.

2.3. Espectrometría de Masas (MS) en el Laboratorio Clínico
2.3.1. Fundamentos de la relación masa/carga y fuentes de ionización (ESI, MALDI).
2.3.2. LC-MS/MS como estándar de oro en la cuantificación de hormonas y fármacos.
2.3.3. Interpretación de espectros y proteómica clínica.

2.4. Inmunoensayos y Biosensores
2.4.1. Cinética antígeno-anticuerpo y métodos de quimioluminiscencia (CLIA).
2.4.2. Ensayos de electroquimioluminiscencia (ECLIA) y su precisión analítica.
2.4.3. Desarrollo de biosensores y tecnología Point-of-Care (POCT).

3. MÓDULO 3: BIOQUÍMICA DEL METABOLISMO DE LOS HIDRATOS DE CARBONO
Objetivo: Analizar los mecanismos fisiopatológicos de la homeostasis de la glucosa y las herramientas diagnósticas para las patologías metabólicas.

3.1. Homeostasis de la Glucosa y Fisiopatología Insulínica
3.1.1. Regulación hormonal: papel del eje páncreas-hígado-músculo.
3.1.2. Mecanismos de resistencia a la insulina y señalización celular.
3.1.3. Glucotoxicidad y vías metabólicas alternativas (vía del poliol).

3.2. Diagnóstico y Monitoreo de la Diabetes Mellitus
3.2.1. Criterios actualizados de la ADA/EASD para el diagnóstico de DM1, DM2 y LADA.
3.2.2. Estandarización de la Hemoglobina Glicosilada (HbA1c) por NGSP.
3.2.3. Utilidad clínica del Péptido C y autoanticuerpos pancreáticos.

3.3. Complicaciones Metabólicas y Monitoreo Continuo
3.3.1. Cetoacidosis diabética y estado hiperosmolar: marcadores críticos.
3.3.2. Microalbuminuria y biomarcadores precoces de nefropatía diabética.
3.3.3. Avances en sistemas de monitoreo continuo de glucosa (MCG) y su integración al laboratorio.

3.4. Hipoglucemia y Errores Innatos del Metabolismo de Carbohidratos
3.4.1. Diagnóstico diferencial de la hipoglucemia en el adulto y el neonato.
3.4.2. Galactosemias y glucogenosis: abordaje bioquímico inicial.
3.4.3. Pruebas dinámicas de estimulación y supresión.

4. MÓDULO 4: LIPOPROTEÍNAS, LÍPIDOS Y RIESGO CARDIOVASCULAR
Objetivo: Estudiar el metabolismo lipídico y la aplicación clínica de los biomarcadores en la estratificación del riesgo aterogénico.

4.1. Metabolismo y Estructura de las Lipoproteínas
4.1.1. Dinámica de quilomicrones, VLDL, LDL y HDL.
4.1.2. Papel de las apolipoproteínas (A-I, B, C, E) en el transporte lipídico.
4.1.3. Receptores de LDL y regulación de la cascada de la síntesis de colesterol.

4.2. Evaluación del Perfil Lipídico Avanzado
4.2.1. Determinación directa vs. cálculo de LDL (Ecuación de Friedewald y Martin-Hopkins).
4.2.2. Importancia clínica de la Lipoproteína (a) [Lp(a)] y partículas remanentes.
4.2.3. Electroforesis de lipoproteínas y fenotipificación de Fredrickson.

4.3. Dislipemias y Aterogénesis
4.3.1. Fisiopatología de la placa de ateroma y mediadores inflamatorios.
4.3.2. Hipercolesterolemia familiar: diagnóstico genético y bioquímico.
4.3.3. Hipertrigliceridemias y su asociación con pancreatitis aguda.

4.4. Biomarcadores de Riesgo Cardiovascular (RCV)
4.4.1. Proteína C Reactiva ultrasensible (PCR-us) como marcador de inflamación.
4.4.2. Cocientes aterogénicos y su valor predictivo.
4.4.3. Nuevos biomarcadores: Homocisteína y Lp-PLA2.

5. MÓDULO 5: PROTEÍNAS PLASMÁTICAS Y ENZIMOLOGÍA CLÍNICA
Objetivo: Capacitar en la interpretación del proteograma y la cinética enzimática aplicada al diagnóstico de daño tisular.

5.1. Análisis de Proteínas Plasmáticas
5.1.1. Fraccionamiento electroforético: interpretación de bandas y picos.
5.1.2. Proteínas de fase aguda: cinética de la Albúmina, Ferritina y Haptoglobina.
5.1.3. Gammapatías monoclonales: inmunofijación y cuantificación de cadenas ligeras libres.

5.2. Cinética Enzimática aplicada al Diagnóstico
5.2.1. Factores que afectan la velocidad de reacción (pH, temperatura, cofactores).
5.2.2. Métodos de medición: cinéticos, punto final y optimizados (IFCC).
5.2.3. Unidades de actividad enzimática (U/L) y estandarización internacional.

5.3. Enzimas de Interés Clínico I: Daño Hepático y Muscular
5.3.1. Transaminasas (ALT/AST) y su cociente de De Ritis.
5.3.2. Creatina Quinasa (CK) y sus isoenzimas en patología neuromuscular.
5.3.3. Lactato Deshidrogenasa (LDH): patrón de isoenzimas y hemólisis.

5.4. Enzimas de Interés Clínico II: Páncreas y Vía Biliar
5.4.1. Amilasa y Lipasa en el diagnóstico de pancreatitis aguda.
5.4.2. Fosfatasa Alcalina (FAL) y GGT en cuadros de colestasis.
5.4.3. Colinesterasa: utilidad en la función hepática e intoxicaciones.

6. MÓDULO 6: FUNCIÓN RENAL Y EQUILIBRIO HIDROELECTROLÍTICO
Objetivo: Evaluar la fisiología renal a través de biomarcadores y comprender el manejo del equilibrio ácido-base.

6.1. Evaluación de la Filtración Glomerular
6.1.1. Creatinina, Urea y Ácido Úrico: limitaciones y aplicaciones.
6.1.2. Ecuaciones de estimación de la tasa de filtración glomerular (CKD-EPI vs. MDRD).
6.1.3. Cistatina C como marcador superior de función renal.

6.2. Análisis de Orina y Sedimento Urinario
6.2.1. Examen físico-químico mediante tiras reactivas y refractometría.
6.2.2. Citometría de flujo urinaria y microscopía de contraste de fase.
6.2.3. Proteinuria y albuminuria: recolección de 24 horas vs. muestras aisladas.

6.3. Trastornos del Equilibrio Hidroelectrolítico
6.3.1. Sodio y Potasio: fisiopatología de la disnatremia y dispotasemia.
6.3.2. Cloro, Magnesio y Fósforo: regulación y manifestaciones clínicas.
6.3.3. Osmolaridad plasmática y urinaria: el hiato osmolar.

6.4. Gasometría Arterial y Equilibrio Ácido-Base
6.4.1. Sistemas amortiguadores corporales y compensación renal/respiratoria.
6.4.2. Interpretación de Acidosis y Alcalosis: el Anión GAP (Brecha aniónica).
6.4.3. Oximetría y parámetros derivados (p50, saturación de O2).

7. MÓDULO 7: ENDOCRINOLOGÍA CLÍNICA Y REPRODUCCIÓN
Objetivo: Comprender la complejidad de los ejes hormonales y su evaluación mediante técnicas de alta sensibilidad.

7.1. Eje Hipotálamo-Hipófisis-Tiroides
7.1.1. TSH, T4 libre y T3: algoritmos de cribado tiroideo.
7.1.2. Autoinmunidad tiroidea: anticuerpos anti-TPO, anti-TG y anti-receptor de TSH.
7.1.3. Tiroglobulina como marcador de seguimiento en cáncer de tiroides.

7.2. Eje Adrenal y Metabolismo del Cortisol
7.2.1. Ritmo circadiano del cortisol y pruebas de supresión con dexametasona.
7.2.2. Diagnóstico diferencial de la Insuficiencia Suprarrenal y Síndrome de Cushing.
7.2.3. Catecolaminas y metanefrinas en el estudio del feocromocitoma.

7.3. Endocrinología de la Reproducción y Embarazo
7.3.1. Gonadotropinas (FSH/LH) y Prolactina: evaluación de la infertilidad.
7.3.2. Marcadores bioquímicos de la reserva ovárica (Hormona Antimülleriana).
7.3.3. Cribado prenatal del primer y segundo trimestre (PAPP-A, fBeta-hCG).

7.4. Hormonas Reguladoras del Crecimiento y Metabolismo Óseo
7.4.1. Hormona del Crecimiento (GH) y factores de crecimiento insulínicos (IGF-1).
7.4.2. Paratohormona (PTH) y Vitamina D: metabolismo del Calcio.
7.4.3. Marcadores de recambio óseo: Telopéptidos y Osteocalcina.

8. MÓDULO 8: HEMATOLOGÍA BENIGNA Y BIOQUÍMICA DEL HIERRO
Objetivo: Correlacionar la bioquímica plasmática con la morfología hemática y el metabolismo de los oligoelementos.

8.1. Metabolismo del Hierro y Anemias
8.1.1. Cinética del hierro: Ferritina, Transferrina e Índice de Saturación.
8.1.2. Papel de la Hepcidina en la regulación del hierro sistémico.
8.1.3. Diagnóstico diferencial de anemias ferropénicas vs. enfermedades crónicas.

8.2. Vitaminas y Cofactores Eritropoyéticos
8.2.1. Vitamina B12 y Ácido Fólico: absorción y deficiencias.
8.2.2. Marcadores de deficiencia funcional: Ácido Metilmalónico y Homocisteína.
8.2.3. Metabolismo de las Porfirinas y diagnóstico de porfirias.

8.3. Hemoglobinopatías y Talasemias
8.3.1. Variantes de la Hemoglobina (HbS, HbC, HbE).
8.3.2. Diagnóstico mediante electroforesis capilar y HPLC.
8.3.3. Cuantificación de Hemoglobina Fetal y A2.

8.4. Bioquímica de la Hemostasia (Breve revisión)
8.4.1. Pruebas de coagulación de rutina (TP, TTPa, Fibrinógeno).
8.4.2. Dímero D: valor predictivo negativo en enfermedad tromboembólica.
8.4.3. Monitoreo de anticoagulantes orales.

9. MÓDULO 9: MARCADORES TUMORALES Y BIOQUÍMICA DEL CÁNCER
Objetivo: Evaluar la utilidad y limitaciones de los biomarcadores oncológicos en el diagnóstico, pronóstico y seguimiento.

9.1. Biología Molecular del Cáncer para el Laboratorio
9.1.1. Oncogenes, genes supresores de tumores y señalización celular.
9.1.2. El microambiente tumoral y la liberación de marcadores a la circulación.
9.1.3. Concepto de Biopsia Líquida: ADN libre circulante (cfDNA).

9.2. Marcadores Tumorales de Uso Clínico Común
9.2.1. PSA (Antígeno Prostático Específico): fracciones libre y compleja.
9.2.2. Marcadores digestivos: CEA, CA 19-9 y su aplicación clínica.
9.2.3. Marcadores en ginecología y mama: CA 125, HE4 y CA 15-3.

9.3. Marcadores de Tumores Germinales y Neuroendocrinos
9.3.1. Alfa-fetoproteína (AFP) y hCG en tumores testiculares.
9.3.2. Cromogranina A y ácido 5-hidroxi-indolacético (5-HIAA).
9.3.3. Calcitonina en el carcinoma medular de tiroides.

9.4. Validación y Seguimiento de Marcadores Tumorales
9.4.1. Sensibilidad y especificidad diagnóstica: curvas ROC.
9.4.2. El fenómeno de "Hook" (gancho) en inmunoensayos de alta concentración.
9.4.3. Interpretación de tendencias y valores críticos en oncología.

10. MÓDULO 10: TOXICOLOGÍA CLÍNICA Y MONITORIZACIÓN DE FÁRMACOS (TDM)
Objetivo: Aplicar principios farmacocinéticos para optimizar la terapia farmacológica y diagnosticar estados de intoxicación.

10.1. Farmacocinética Aplicada al Laboratorio
10.1.1. Conceptos de absorción, distribución, metabolismo y eliminación (ADME).
10.1.2. Estado de equilibrio (Steady State) y tiempo de toma de muestra (Valle vs. Pico).
10.1.3. Variabilidad farmacogenética: Citocromo P450.

10.2. Monitorización Terapéutica de Fármacos (TDM)
10.2.1. Inmunosupresores: Ciclosporina, Tacrolimus y Sirolimus.
10.2.2. Antiepilépticos y fármacos cardioactivos (Digoxina).
10.2.3. Antibióticos de estrecho margen terapéutico: Vancomicina y Aminoglucósidos.

10.3. Toxicología de Drogas de Abuso
10.3.1. Técnicas de cribado (screening) vs. técnicas confirmatorias (GC-MS).
10.3.2. Metabolismo y ventanas de detección de opiáceos, cocaína y anfetaminas.
10.3.3. Adulterantes y falsos positivos en las pruebas de orina.

10.4. Toxicología Metálica y Ambiental
10.4.1. Intoxicación por plomo (saturnismo) y medición de protoporfirina zinc.
10.4.2. Mercurio, Arsénico y Cadmio: fuentes de exposición y bioacumulación.
10.4.3. Metodología de Espectroscopía de Absorción Atómica.

11. MÓDULO 11: BIOQUÍMICA MOLECULAR Y GENÉTICA CLÍNICA
Objetivo: Integrar las técnicas de biología molecular en el arsenal diagnóstico del laboratorio de bioquímica moderna.

11.1. Técnicas de Amplificación de Ácidos Nucleicos
11.1.1. PCR en tiempo real (qPCR): cuantificación y curvas de fusión.
11.1.2. PCR digital y su aplicación en la detección de mutaciones raras.
11.1.3. Automatización de la extracción y purificación de ADN/ARN.

11.2. Secuenciación de Nueva Generación (NGS)
11.2.1. Fundamentos de la secuenciación masiva en paralelo.
11.2.2. Aplicaciones en el diagnóstico de enfermedades raras y paneles de cáncer.
11.2.3. Bioinformática básica para el analista clínico: interpretación de variantes.

11.3. Diagnóstico Molecular de Enfermedades Infecciosas
11.3.1. Carga viral (VIH, VHB, VHC) y monitorización del tratamiento.
11.3.2. Detección molecular de patógenos respiratorios y gastrointestinales.
11.3.3. Resistencias antibióticas desde la perspectiva molecular.

11.4. Epigenética y Farmacogenómica
11.4.1. Metilación del ADN y modificación de histonas como biomarcadores.
11.4.2. Implementación de pruebas farmacogenómicas en la clínica diaria.
11.4.3. Ética y confidencialidad en el manejo de datos genéticos.

12. MÓDULO 12: ANALÍTICA DE DATOS, IA Y FUTURO DEL LABORATORIO
Objetivo: Proyectar la práctica del laboratorio hacia la era digital, el Big Data y la inteligencia artificial.

12.1. Control Estadístico de Procesos (SQC)
12.1.1. Reglas de Westgard y gráficos de Levey-Jennings avanzados.
11.1.2. Gestión del Error Total Máximo Permitido (TEa) y Seis Sigma.
11.1.3. Verificación de métodos: veracidad, precisión y linealidad.

12.2. Informática de Laboratorio y Conectividad
12.2.1. Sistemas de Información del Laboratorio (SIL) y Middleware.
12.2.2. Interoperabilidad (HL7) y comunicación con el Expediente Clínico Electrónico.
12.2.3. Ciberseguridad y protección de datos sensibles.

12.3. Inteligencia Artificial (IA) y Machine Learning
12.3.1. Algoritmos de soporte a la decisión clínica (CDSS).
12.3.2. Redes neuronales aplicadas al análisis de imágenes en sedimento y frotis.
12.3.3. Modelos predictivos para la detección temprana de sepsis y fallo renal.

12.4. El Laboratorio 4.0: Tendencias Emergentes
12.4.1. Metabolómica y Lipidómica: el nuevo horizonte del diagnóstico.
12.4.2. Microfluídica y "Lab-on-a-chip".
12.4.3. Sostenibilidad y gestión de residuos químicos en el laboratorio moderno.